IPS誘導(dǎo)腸類器官的培養(yǎng)分為三個(gè)主要階段:人多能干細(xì)胞的培養(yǎng)、內(nèi)胚層分化及中/后腸模式化誘導(dǎo)、以及類器官的培養(yǎng)。本文將重點(diǎn)介紹第三階段——類器官培養(yǎng)。
類器官培養(yǎng)(14-28天)
在準(zhǔn)備階段,我們需要以下試劑和耗材:人正常腸類器官培養(yǎng)試劑盒(abs9545)、基質(zhì)膠(低因子、無酚紅)(abs9495)、15ml離心管(abs7102)、多個(gè)15ml EP管(abs7119)、24孔細(xì)胞培養(yǎng)板(abs7035)、金屬冰盒。具體組分及規(guī)格如下:
- 類器官培養(yǎng)基A: 100ml
- 類器官原代培養(yǎng)緩沖液B: 250ml
- 類器官傳代消化液D: 30ml
- 組織保存液E: 100ml
- 類器官凍存液F: 20ml
- 類器官傳代培養(yǎng)緩沖液G: 250ml
操作流程
操作的關(guān)鍵在于加膠、點(diǎn)板和加液,這些步驟對于整個(gè)原代操作至關(guān)重要。
1. 加膠 - 點(diǎn)板 - 加液
在進(jìn)行這一過程之前,請做好以下準(zhǔn)備:
- 將基質(zhì)膠放入金屬冰盒,放置在4℃冰箱中融化過夜。
- 在-20℃下預(yù)冷槍頭和離心管至少半小時(shí)。
- 融化后的基質(zhì)膠建議在4℃下保存,且推薦在2周內(nèi)使用完畢。
接種的要求是在24孔板(abs7035)中,每孔加入25μl基質(zhì)膠球狀體混合物,以及500-750μl的類器官培養(yǎng)基。接種密度建議為基質(zhì)膠總體積與球狀體總體積的比例為25:1。對于50個(gè)球狀體,每25μl基質(zhì)膠的接種也是一個(gè)參考參數(shù)。
在加膠時(shí),向細(xì)胞團(tuán)沉淀中加入基質(zhì)膠(abs9495),并輕輕地吹打混勻(請注意不要過于用力以免產(chǎn)生氣泡),然后進(jìn)行點(diǎn)板。整個(gè)操作應(yīng)在金屬冰盒或冰上進(jìn)行,提醒您在熟練掌握此步驟后,加膠、混勻及點(diǎn)板應(yīng)控制在半分鐘之內(nèi),以保持基質(zhì)膠良好的流動性。
待鋪好的培養(yǎng)板放入37℃培養(yǎng)箱中,保持40-60分鐘直至成膠,然后添加500-750μl類器官培養(yǎng)基A進(jìn)行培養(yǎng)。一般情況下,經(jīng)過10-14天,大多數(shù)類器官的直徑將在200-500μm范圍內(nèi),此時(shí)可進(jìn)行傳代操作。
傳代操作
在類器官數(shù)量較多或體積較大時(shí),可按照以下步驟進(jìn)行傳代:
1. 類器官收集及洗滌
使用移液器吸去培養(yǎng)基后,向每孔添加1-2ml 4℃類器官傳代培養(yǎng)緩沖液G,輕柔吹散基質(zhì)膠后收集至15ml離心管中進(jìn)行洗滌。對于洗滌步驟,可以添加類器官傳代培養(yǎng)緩沖液G至14ml,然后在4℃靜置40分鐘或-20℃放置5分鐘,以軟化基質(zhì)膠。
隨即進(jìn)行300g,4℃離心5分鐘。在理想的情況下,分成三層時(shí),保留類器官沉淀,并棄掉上清與基質(zhì)膠層。若出現(xiàn)異常現(xiàn)象,則需要重復(fù)洗滌步驟以確保基質(zhì)膠的有效去除。
2. 類器官消化
在超凈臺內(nèi)添加2-3ml類器官傳代消化液D進(jìn)行2-3分鐘的消化,期間輕輕吹打1-2次。如果消化的情況良好,加入5倍的類器官傳代培養(yǎng)緩沖液G以終止消化,然后進(jìn)行離心操作。若在此過程中有殘留的基質(zhì)膠,殘余量<50μl是正常的,不會影響傳代類器官的生長。
通過融合以上步驟,您可以在培養(yǎng)和傳代過程中高效地獲得功能性的人類腸道類器官。特別提醒您,遵循“俄羅斯專享會294”的相關(guān)標(biāo)準(zhǔn),在試驗(yàn)操作中保持全面的衛(wèi)生和消毒措施,以確保培養(yǎng)過程的成功。
如果您在實(shí)驗(yàn)中遇到困難,歡迎隨時(shí)交流,請一起探討更多的實(shí)驗(yàn)問題!
重要提示:操作時(shí)請確保Matrigel在全程冰上的環(huán)境中,以避免提前固化,密度控制亦為關(guān)鍵,細(xì)胞必須在85-90%的融合率條件下進(jìn)行分化,以盡量提高球狀體的形成率。使用新鮮的生長因子,以避免其活性的降低,并定期檢測支原體以確保無菌操作。
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